Сравнительный анализ результатов бактериологического и хромато-масс-спектро метрического исследования плеврального экссудата при эмпиеме плевры

ЦЕЛЬ. Определение возможности применения хромато-масс-спектрометрического исследования для выбора этиотропной терапии пациентам с эмпиемой плевры.

МЕТОДЫ И МАТЕРИАЛЫ. Проведен анализ результатов обследования и лечения 207 пациентов с эмпиемой плевры за период с 2017 по 2018 г. Всем пациентам выполнено бактериологическое исследование плеврального экссудата, из них 20 пациентам дополнительно проведено хромато-масс-спектрометрическое исследование. Пациенты переведены в специализированный торакальный стационар из других лечебных учреждений, где получали курс эмпирической антибактериальной терапии и было выполнено дренирование плевральной полости.

РЕЗУЛЬТАТЫ. При бактериологическом исследовании содержимого плевральной полости рост микрофлоры обнаружен у 112 (54,1 %) пациентов. Ведущими возбудителями были грамотрицательные бактерии, выделенные из содержимого плевральной полости у 45 % больных при закрытой и у 63,5 % – при открытой эмпиеме плевры. Преобладали полиантибиотикорезистентные штаммы P. aeruginosa (30,4 %), K. Pneumoniae (19,6 %) и A. baumannii (12,5 %), сохранявшие чувствительность к Полимиксину, а в ряде случаев – к Амикацину. У 25 (22,3 %) пациентов были обнаружены микромицеты рода Candida. Роста анаэробной микрофлоры не выявлено. При хромато-масс-спектрометрическом исследовании плеврального экссудата выявлены маркёры 30 таксонов бактерий, вирусов и грибов, превышавших норму более чем в 2 раза. Маркёры грамотрицательных бактерий не были обнаружены. Доля анаэробных микроорганизмов составила 76,6 %, при этом наибольшая концентрация выявлена для бактерий рода Clostridium и Eubacterium.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ. Выбор этиотропной терапии пациентам с эмпиемой плевры затруднен в связи с отсутствием роста микрофлоры при посевах содержимого плевральной полости у 45,9 % пациентов, а также несовпадением результатов бактериологического и хромато-масс-спектрометрического исследования. Диагностические методы выявления возбудителей эмпиемы плевры требуют дальнейшего совершенствования.

1. Бисенков Л. Н., Чуприна А. П., Гладышев Д. В. Возможности торакоскопии при эмпиеме плевры // Материалы XIII Национального конгресса по болезням органов дыхания. 2003. С. 43.

2. Ионов П. М., Елькин А. В., Дейнега И. В. и др. Этиология и клинические формы нагноительных заболеваний легких и плевры у ВИЧ-инфицированных больных // Вестн. хир. им. И. И. Грекова. 2019. Т. 178, № 4. С. 10–14.

3. Farjah F., Symons R. G., Krishnadasan B. et al. Management of pleural space infections : a population-based analysis // J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 2007. Vol. 133, № 2. P. 346–351.

4. Амарантов Д. Г., Хоринко А. В., Косарева П. В. Этиология, патогенез, клиника, диагностика и лечение эмпиемы плевры. Современные представления (Обзор литературы) // Вестн. Урал. мед. акад. науки. 2016. Т. 3. С. 61–74.

5. Петухов В. И., Русецкая М. О. Клинико-лабораторная диагностика и лечение гнойных заболеваний легких и плевры // Вестн. Витеб. гос. мед. ун-та. 2009. Т. 8, № 4. С. 1–12.

6. Даниелян Ш. Н., Абакумов М. М., Черненькая Т. В. Гнойные осложнения закрытой травмы груди // Хирургия. Журн. им. Н. И. Пирогова. 2011. Т. 3. С. 19–25.

7. Кубраков К. М., Абодовский С. А., Подолинский Ю. С. и др. Антибиотикорезистентность возбудителей эмпиемы плевры // Вестн. Витеб. гос. мед. ун-та. 2016. Т. 15, № 6. С. 54–61.

8. Иванов Ф. В., Ивченко Е. В., Котив Б. Н. и др. Эффективность рациональной антибактериальной терапии у больных эмпиемой плевры в условиях лечебного учреждения // Вестн. Росс. воен.-мед. акад. 2012. Т. 4. С. 8–11.

9. Wallet F., Nseir S., Baumann L. et al. Preliminary clinical study using a multiplex real-time PCR test for the detection of bacterial and fungal DNA directly in blood // Clin. Microbiol. Infect. 2010. Vol. 16, № 6. Р. 774–779.

10. Schmidt V., Jarosch A., März P. et al. Rapid identification of bacteria in positive blood culture by matrixassisted laser desorption ionization time-of-flight mass spectrometry // Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 2012. Vol. 31, № 3. Р. 311–317.

11. Осипов Г. А., Федосова Н. Ф., Лядов К. В. Количественный insitu микробиологический анализ по липидным маркерам в биологических жидкостях с использованием метода газовой хроматографии-масс-спектрометрии // Здравоохранение и мед. технологии. 2007. Т. 5. С. 20–23.

12. Жевелик О. Д., Шмиголь М. В. Применение метода масс-спектрометрии микробных маркеров при септическом состоянии // Здравоохранение Югры: опыт и инновации. 2019. Т. 2. С. 35–36.

13. Колмык В. А., Насыров Р. А., Кутушева Г. Ф. Сравнительный анализ иммуногистохимического и хромато масс спектрометрического исследований в диагностике этиологического фактора хронического эндометрита // Медицина: теория и практика. 2019. Т. 4. С. 267–268.

14. Струкова Е. Г., Ефремов А. А., Гонтова А. А. и др. Определение микро-экологического статуса и диагностика инфекций организма человека с использованием метода хромато-масс-спектрометрии // Журн. Сиб. федер. ун-та : Химия. 2009. Т. 4. С. 351–357.

15. Beloborodova N. V., Osipov G. A. Small molecules originating from microbes (SMOM) and their role in microbes-host relationship // Microbial ecology in Health and Disease. 2000. Vol. 12, № 1. Р. 12–21.

16. Киселев В. В., Андрейцева О. И., Бойко Н. Б. и др. Микроэкологический статус кандидатов на пересадку печени // Трансплантология. 2010. Т. 1. С. 37–45.